BioSphère Santé

25/05/2026

اللهم آمين

24/01/2026

Termes médicaux

18/01/2026

15/01/2026

Le corps humain

14/01/2026

/Prélèvement (urines)
Liquide de ponction

11/01/2026

Informations pratiques pour l'analyse microscopique des urines

04/01/2026

Voici les détails de cette manipulation :
​1. La zone de travail (Le "Cône de Stérilité")
​Le bec Bunsen n'est pas là uniquement pour stériliser des instruments. En brûlant, il crée un courant d'air ascendant.
​Rayon d'action : Cela crée une zone stérile d'environ 20 cm de rayon autour de la flamme.
​Objectif : Toute manipulation (ouvrir la boîte de Petri, manipuler l'écouvillon) doit se faire impérativement dans ce périmètre pour éviter que des bactéries présentes dans l'air ne contaminent la culture.
​2. La technique de l'écouvillonnage
​Dans l'image, la personne utilise un écouvillon. Cette méthode est souvent utilisée pour réaliser un tapis bactérien (un ensemencement dense et uniforme) :
​On trempe l'écouvillon dans une suspension bactérienne.
​On frotte toute la surface de la gélose en tournant la boîte de 60° à chaque passage pour ne laisser aucun espace vide.
​L'application : C'est l'étape préliminaire pour un antibiogramme. Une fois le "tapis" fait, on dépose des disques d'antibiotiques pour voir lesquels empêchent les bactéries de pousser.
​3. Les étapes clés de la manipulation
​Si vous deviez reproduire ce geste, voici le protocole strict :
​Stérilisation : Allumer le bec Bunsen et désinfecter le plan de travail.
​Identification : Noter sur le bord de la boîte (côté gélose) le nom de l'échantillon et la date.
​Inoculation : Ouvrir légèrement le couvercle de la boîte (toujours près de la flamme) et passer l'écouvillon.
​Incubation : Placer la boîte à l'envers (couvercle en bas) dans une étuve, généralement à 37°C, pour permettre la croissance.
​Le saviez-vous ?
​On place toujours les boîtes à l'envers dans l'étuve pour éviter que la condensation qui se forme sur le couvercle ne retombe sur la gélose, ce qui ferait "baver" les colonies et rendrait l'examen impossible.

03/01/2026

Test de Compatibilité (Compatibility Test)
​LISS Coombs, NaCl ou Enzyme
​1. Étiquetage : Étiqueter la carte avec l'identifiant (ID) du patient et du donneur, puis retirer l'opercule.
​2. Suspension cellulaire : Préparer des suspensions de globules rouges à 0,8 % pour le patient et le donneur (1,0 ml de diluant 2 + 20 µl de sang ou 10 µl de concentré de globules rouges).
​3. Distribution des cellules :
​Ajouter 50 µl de chaque cellule de donneur dans un microtube (1-5).
​Ajouter 50 µl de cellules du receveur dans le tube suivant disponible (Auto-témoin / Auto control).
​Ajouter 25 µl de plasma ou de sérum du receveur dans chaque tube.
​3a. Test enzymatique : Pour les tests enzymatiques, ajouter 25 µl de diluant 1 (Broméline) dans chaque tube.
​4. Incubation : Incuber pendant 15 minutes à 37°C.
​5. Centrifugation : Centrifuger la carte dans une centrifugeuse ID.
​6. Interprétation : Interpréter les résultats.
​Note importante : Les groupes sanguins du donneur et du receveur doivent également être confirmés pour vérifier la compatibilité.

02/01/2026

Différents anomalies des globules rouges